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山东第一医科大学(泰山医学院):《病理生理学》课程实验指导(负责人:商战平)

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山东第一医科大学(泰山医学院):《病理生理学》课程实验指导(负责人:商战平)
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病理生理学实验指导 一、学时分配: 课程总学时:24学时 二、实验内容: 实验一家兔高钾血症 学时数4 【目的与要求】: 1、掌握家免高钾血症模型的复制方法 2、观察高钾血症时家兔心电图变化的特征。 3、自行设计和实施抢救治疗方案 4、了解血钾升高后,对心肌细胞的毒性作用。 【器材与药品】BL一420生物实验系统多媒体,输液器一套,气管插管,5m注射器,头皮针。3% 戊巴比妥钠,0.5%氯化钾,5%氯化钙,肝素生理盐水。 【方法与步骤】称重、全麻、固定,行气管插管;分离颈总动脉插动脉插管并与压力换能器连接, 测定血压;连接心电导联,右前肢(红,左前肢(黄),右下肢(黑),左下肢(绿),并将针头刺入皮 下,观察心电;将充有肝素生理盐水的头皮针刺入家兔耳缘静脉内,然后与输液装置相连,输液瓶 内盛0.5%氯化钾350ml。按下列步骤操作并观察记录心电和血压。 1.记录输入氯化钾前的心电、血压和心率; 2.以20滴/分速度滴入0.5%氯化钾30分钟,每间隔10分钟记录1次心电、血压和心率并观察心电图变 化: 3.以60滴/分速度滴入0.5%氯化钾30分钟,每间隔10分钟记录1次心电、血压和心率并观察心电图变 化: 4.取1%氯化钾2ml,静脉缓慢注入(15-20分钟),记录心电、血压和心率,观察心电图变化,如无显 著异常变化可再缓注215%氯化钾,直至出现室颤时停止推注,并立即用5%氯化钙静脉缓注抢 教,同时观察心电图恢复状态,当恢复到注入1%氯化钾前状态时停止注入氯化钙; 5.再次快速静脉推注1%氯化钾,观察记录心电、血压和心率变化,直至心电图出现室颤或成一直线 时为止,立即开胸观察心脏停跳状态,肺水肿、胸水、肝淤血等脏器变化状态,并记录、分析其形 成机制。 【实验讨论】 1、注射KC后,ECG有哪些改变,机理? 2、出现高钾血症后,可设计几种抢救治疗方案?理论根据是什么? 实验二缺氧 学时数:4学时 【实验目的】复制不同类型缺氧动物模型,观察急性缺氧过程中机体的代偿适应性变化,分析其发 牛机制 (一)家兔乏氧性缺氧 【实验动物】家兔 【器材与药品】LMS-2A(B)型二道生理记录仪,动脉插管,气管插管,1000ml再吸入式缺氧瓶,ml 注射器,注射针头,动脉夹,常规手术器械,血气分析仪,动脉套针;1%普鲁卡因,钠石灰,肝素 生理盐水

病理生理学实验指导 一、学时分配: 课程总学时:24学时 二、实验内容: 实验一 家兔高钾血症 学时数4 【目的与要求】: 1、掌握家兔高钾血症模型的复制方法。 2、观察高钾血症时家兔心电图变化的特征。 3、自行设计和实施抢救治疗方案。 4、了解血钾升高后,对心肌细胞的毒性作用。 【器材与药品】BL—420生物实验系统多媒体,输液器一套,气管插管,5ml注射器,头皮针。3% 戊巴比妥钠,0.5%氯化钾,5%氯化钙,肝素生理盐水。 【方法与步骤】称重、全麻、固定,行气管插管;分离颈总动脉插动脉插管并与压力换能器连接, 测定血压;连接心电导联,右前肢(红),左前肢(黄),右下肢(黑),左下肢(绿),并将针头刺入皮 下,观察心电;将充有肝素生理盐水的头皮针刺入家兔耳缘静脉内,然后与输液装置相连,输液瓶 内盛0.5%氯化钾350ml。按下列步骤操作并观察记录心电和血压。 1.记录输入氯化钾前的心电、血压和心率; 2.以20滴/分速度滴入0.5%氯化钾30分钟,每间隔10分钟记录1次心电、血压和心率并观察心电图变 化; 3.以60滴/分速度滴入0.5%氯化钾30分钟,每间隔10分钟记录1次心电、血压和心率并观察心电图变 化; 4.取1%氯化钾2ml,静脉缓慢注入(15-20分钟),记录心电、血压和心率,观察心电图变化,如无显 著异常变化可再缓注2m1 5%氯化钾,直至出现室颤时停止推注,并立即用5%氯化钙静脉缓注抢 救,同时观察心电图恢复状态,当恢复到注入1%氯化钾前状态时停止注入氯化钙; 5.再次快速静脉推注1%氯化钾,观察记录心电、血压和心率变化,直至心电图出现室颤或成一直线 时为止,立即开胸观察心脏停跳状态,肺水肿、胸水、肝淤血等脏器变化状态,并记录、分析其形 成机制。 【实验讨论】 1、注射KCl后,ECG有哪些改变,机理? 2、出现高钾血症后,可设计几种抢救治疗方案?理论根据是什么? 实验二 缺氧 学时数:4学时 【实验目的】复制不同类型缺氧动物模型,观察急性缺氧过程中机体的代偿适应性变化,分析其发 生机制。 (一)家兔乏氧性缺氧 【实验动物】家兔 【器材与药品】LMS-2A(B)型二道生理记录仪,动脉插管,气管插管,1000ml再吸入式缺氧瓶,lml 注射器,注射针头,动脉夹,常规手术器械,血气分析仪,动脉套针;1%普鲁卡因,钠石灰,肝素 生理盐水

【方法与步骤】 家免称重后仰卧位因定于兔台上,颈部剪毛,在1%普鲁卡因局麻下,手术分离气管和颈总动脉,行 气管插管术,颈总动脉插管连于压力换能器,描记血压,在剑突处皮肤固定一丝线,连于拉力传感 器描记呼吸;从耳缘静脉注入1%肝素生理盐水1mkg,行全身肝素化,上述手术完毕后作如下观 1、描记正常血压、呼吸、记录心率、呼吸频率,观察口唇粘膜及动脉插管内血液颜色。 2、将胶管将缺氧瓶内相通的玻璃管和气管插管相连接,使免的呼吸只能与缺氧瓶相通,立即开始记 录开始缺氧时间。 3、在缺氧开始后5分钟、10分钟、20分钟时分别观察并记录血压、心率、呼吸频率、呼吸幅度、动 脉血液及黏膜颜色变化。 (二)小鼠不同类型的缺氧 【实验动物】:小白鼠 【器材与药品】125m缺氧瓶,C0发生装置、5ml 2ml刻度吸管,1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊 子;钠石灰(NaOH-CaO)、甲酸、浓硫酸、5%亚硝酸钠(NaNO2),1%美蓝 【方法与步骤】 取体重相近的小白鼠5只,观察正常情况后做如下处理: 第一只腹部皮下注入5%亚硝酸钠0.3ml,开始记时: 第一只腹部皮下注人5%亚消酸纳0.3ml后.立即腹腔注时1%羊蓝0.5开治尸时 第三只放入广口瓶中,然后与CO发生装置相连: 第四只放入装有10克钠石灰的125ml广口缺氧瓶中用凡士林密封瓶口后开始记时。 第五只作为正常对照,剖检前推颈椎断髓处死。 观察各鼠的一股状态,呼吸,比较前两只鼠,的存活时间。死后同时剖检,比较肝脏和血液颜色(第二只除外),并分析机理。 【实验讨论】上述几种缺氧的发生机制,应用理论分析其实验现象。 实验三家兔实验性肺水肿 学时数:4学时 【实验目的】 1复制实验性肺水肿 2了解肺水肿的表现及发病机理。 【实验药品及器材】婴儿秤、天平、呼吸描记装置,静脉导管及输液装置,手术器材一套,听诊 器、烧杯、纱布、线、兔固定台。 【实验步骤】 一实验组 1、称重、全麻 一侧颈外静脉插管,连结输液装置,缓慢输入生理盐水(5-10滴/分)。 2、连结呼吸装置,描记一段正常呼吸,并用听诊器听肺的呼吸音,输入37℃生理盐水(输入总量按 100m/kg,输液速度180-200滴/分),待滴注接近完半时,立即输入肾上腺素(按肾上腺素 0.45ma/ka). 3.密切观察呼吸改变和气管内是否有粉红色泡沫液体溢出,并用听诊器听诊肺部有无湿性罗音出现。 当证明肺水肿出现时,则夹住气管,处死动物,打开胸腔,把肺取出,计算肺系数,肉眼观察肺大 体改变。切开肺,观察切面的改变,注意有无泡沫液体流出。 二对照组 与实验组不同的是不输入肾上腺素,其余相同

【方法与步骤】 家兔称重后仰卧位因定于兔台上,颈部剪毛,在1%普鲁卡因局麻下,手术分离气管和颈总动脉,行 气管插管术,颈总动脉插管连于压力换能器,描记血压,在剑突处皮肤固定一丝线,连于拉力传感 器描记呼吸;从耳缘静脉注入1%肝素生理盐水1ml/kg,行全身肝素化,上述手术完毕后作如下观 察: 1、描记正常血压、呼吸、记录心率、呼吸频率,观察口唇粘膜及动脉插管内血液颜色。 2、将胶管将缺氧瓶内相通的玻璃管和气管插管相连接,使兔的呼吸只能与缺氧瓶相通,立即开始记 录开始缺氧时间。 3、在缺氧开始后5分钟、10分钟、20分鈡时分别观察并记录血压、心率、呼吸频率、呼吸幅度、动 脉血液及黏膜颜色变化。 (二)小鼠不同类型的缺氧 【实验动物】:小白鼠 【器材与药品】125ml缺氧瓶,CO发生装置、5ml、2ml刻度吸管,1ml注射器、酒精灯、剪刀、镊 子;钠石灰(NaOH·CaO)、甲酸、浓硫酸、5%亚硝酸钠(NaNO2),1%美蓝。 【方法与步骤】 取体重相近的小白鼠5只,观察正常情况后做如下处理: 第一只腹部皮下注入5%亚硝酸钠0.3ml,开始记时; 第二只腹部皮下注人5%亚硝酸纳0.3ml后,立即腹腔注射1%美蓝0.5ml开始记时; 第三只放入广口瓶中,然后与CO发生装置相连; 第四只放入装有10克钠石灰的125ml广口缺氧瓶中用凡士林密封瓶口后开始记时。 第五只作为正常对照,剖检前推颈椎断髓处死。 观察各鼠的一般状态,呼吸,比较前两只鼠的存活时间。死后同时剖检,比较肝脏和血液颜色(第二只除外),并分析机理。 【实验讨论】上述几种缺氧的发生机制,应用理论分析其实验现象。 实验三家兔实验性肺水肿 学时数:4学时 【实验目的】 1.复制实验性肺水肿。 2.了解肺水肿的表现及发病机理。 【实验药品及器材】婴儿秤、天平、呼吸描记装置,静脉导管及输液装置,手术器材一套,听诊 器、烧杯、纱布、线、兔固定台。 【实验步骤】 一.实验组 1、称重、全麻、一侧颈外静脉插管,连结输液装置,缓慢输入生理盐水(5-10滴/分)。 2、连结呼吸装置,描记一段正常呼吸,并用听诊器听肺的呼吸音,输入37℃生理盐水(输入总量按 100ml/kg,输液速度180-200滴/分),待滴注接近完毕时,立即输入肾上腺素(按肾上腺素 0.45mg/kg)。 3.密切观察呼吸改变和气管内是否有粉红色泡沫液体溢出,并用听诊器听诊肺部有无湿性罗音出现。 当证明肺水肿出现时,则夹住气管,处死动物,打开胸腔,把肺取出,计算肺系数,肉眼观察肺大 体改变。切开肺,观察切面的改变,注意有无泡沫液体流出。 二.对照组 与实验组不同的是不输入肾上腺素,其余相同

肺系数计算公式:肺系数=肺重量(g)体重(kg) 正常免肺系数为4-5。 【实验讨论】 实验组和对照组的不同结果,联系理论,分析肺水肿发生的机理。 实验四氨中毒性肝性脑病 学时数:4学时 【实验目的】:论证氨在肝性脑病发病机理中的作用。 【实验器材及药品】: 1%普鲁卡因溶液,复方氯化氨溶液,复方氯化纳溶液,手术器材一套,注射 器二个(5ml、10ml),十二指肠插管一个。 【实验步骤】 一甲兔作肝大部切除,十二指肠内注入氯化氨溶液。 1.剪去腹部正中毛,1%的普鲁卡因溶液局部麻醉后,从剑突起作腹部正中切口,长约8cm,右手按 住肝脏隔面,剪断肝与横膈间的镰状韧带,再将肝叶上翻,分离肝胃韧带,使肝叶完全游离,然后 以右手食、中两指夹持粗棉线,沿肝左外叶、肝左中叶、右中叶和方形叶之根部结扎,待上述肝叶 变成暗褐色时,逐叶剪除,将剩余肝叶轻轻送回腹腔,观察肝脏有无出血。 2.找到胃幽门部后,顺形找到十二指肠,距幽门部2cm处用粗棉线结扎,纵行剪开肠壁,将插管插入 十二指肠,作荷包缝合固定。将十二指肠送回腹腔,并把插管的另一端留在腹庭外,关闭腹腔。 3.每隔5分钟,向肠腔内注入氯化氨溶液5ml,记录用药量,动物抽搐出现的时间,死亡时间,并注 意观察动物的各种表现。 二乙兔作假肝手术,十二指肠内注入氯化复溶液。 1肝脏手术同前,但不作肝脏结扎和切除,只把肝脏游离。 2.十二指肠内注入氯化氨溶液。 3.当注入药量达甲兔抽搐药量时,观察动物变化。然后继续注射氯化氨溶液直至动物出现抽搐,记录 用药量及实验开始到抽搐出现的时间。 三丙兔作肝大部切除,十二指肠注入氯化纳溶液 手术方法同甲兔。十二指肠注入氯化纳溶液,观察动物的变化。 【注意事项】: 1游离镰状初带时,道防刺破肝脏和隔肌,以免告成出血和气阀。 2.淤离肝脏时,动作应轻柔,以免肝脏破裂出血,结扎线应位于肝叶根部,以免勒破肝叶,注意保留 残留的肝叶根部要长一点,以免结扎线脱落。 3.肝脏结扎要牢固,以免出血。在实验中经常检查肝残端及腹腔有无出血,如有出血应及时结扎。 4.经常检查十二指肠插管是否脱落,以免药液不能注入肠腔。 【讨论】 1.本次实验结果如何?三组有何差异?为什么? 2你认为氨在肝性脑病发病机理中的作用如何? 实验五家兔失血性休克 学时数:4学时 【目的要求】 1.复制家免失血性休克。 2.观察休克时动物的表现及微循环的变化

肺系数计算公式:肺系数=肺重量(g)/体重(kg) 正常兔肺系数为4-5。 【实验讨论】 实验组和对照组的不同结果,联系理论,分析肺水肿发生的机理。 实验四 氨中毒性肝性脑病 学时数:4学时 【实验目的】:论证氨在肝性脑病发病机理中的作用。 【实验器材及药品】:1%普鲁卡因溶液,复方氯化氨溶液,复方氯化纳溶液,手术器材一套,注射 器二个(5ml、l0ml),十二指肠插管一个。 【实验步骤】: 一.甲兔作肝大部切除,十二指肠内注入氯化氨溶液。 1.剪去腹部正中毛,1%的普鲁卡因溶液局部麻醉后,从剑突起作腹部正中切口,长约8cm,右手按 住肝脏隔面,剪断肝与横膈间的镰状韧带,再将肝叶上翻,分离肝胃韧带,使肝叶完全游离,然后 以右手食、中两指夹持粗棉线,沿肝左外叶、肝左中叶、右中叶和方形叶之根部结扎,待上述肝叶 变成暗褐色时,逐叶剪除,将剩余肝叶轻轻送回腹腔,观察肝脏有无出血。 2.找到胃幽门部后,顺形找到十二指肠,距幽门部2cm处用粗棉线结扎,纵行剪开肠壁,将插管插入 十二指肠,作荷包缝合固定。将十二指肠送回腹腔,并把插管的另一端留在腹庭外,关闭腹腔。 3.每隔5分钟,向肠腔内注入氯化氨溶液5ml,记录用药量,动物抽搐出现的时间,死亡时间,并注 意观察动物的各种表现。 二.乙兔作假肝手术,十二指肠内注入氯化氨溶液。 1.肝脏手术同前,但不作肝脏结扎和切除,只把肝脏游离。 2.十二指肠内注入氯化氨溶液。 3.当注入药量达甲兔抽搐药量时,观察动物变化。然后继续注射氯化氨溶液直至动物出现抽搐,记录 用药量及实验开始到抽搐出现的时间。 三.丙兔作肝大部切除,十二指肠注入氯化纳溶液。 手术方法同甲兔。十二指肠注入氯化纳溶液,,观察动物的变化。 【注意事项】: 1.游离镰状韧带时,慎防刺破肝脏和膈肌,以免造成出血和气胸。 2.淤离肝脏时,动作应轻柔,以免肝脏破裂出血,结扎线应位于肝叶根部,以免勒破肝叶,注意保留 残留的肝叶根部要长一点,以免结扎线脱落。 3.肝脏结扎要牢固,以免出血。在实验中经常检查肝残端及腹腔有无出血,如有出血应及时结扎。 4.经常检查十二指肠插管是否脱落,以免药液不能注入肠腔。 【讨论】 1.本次实验结果如何?三组有何差异?为什么? 2.你认为氨在肝性脑病发病机理中的作用如何? 实验五 家兔失血性休克 学时数:4学时 【目的要求】 1.复制家兔失血性休克。 2.观察休克时动物的表现及微循环的变化

3探讨失血性休克的发病机理。 【药品与器材】25%乌拉坦溶液,1%普鲁卡因溶液,0.3%肝素溶液,生理盐水,微循环灌流液。 手术器材一套,BL一410多媒体,微循环灌流装置,输血输液装置,动、静脉套管,测中心静脉压装 置,1m1、10ml注射器各1只。温度计。 【实验步骤】 1、取家兔一只称重后由耳缘静脉注入25%乌拉坦溶液(4ml/kg〉。 2、动物仰卧固定于实验台,在甲状软骨下切开颈正中皮肤约6cm,钝性分离颈部软组织,游离出左 侧颈总动脉和右侧颈外静脉,穿线后备用。 3、左侧腹股沟部位触及动脉博动后,沿动脉走行方向作3c皮肤切口,分离出股动脉,穿线、插入 动脉插管,以备放血。 4、在右侧腹直肌旁作6cm纵切口,钝性分离肌肉,打开腹腔后,推开大网膜,找出一段游离度较大 的小肠肠袢,轻轻的从腹腔中拉出,放置在微循环灌流盒中,显微镜下观察微循环的变化。 5、将动脉导管插入左侧颈总动脉,连接血压测量装置。将连接输液装置的静脉导管插入右侧颈 外静脉,以备输液。将连接于记录仪的呼吸描记装置夹住家兔胸部呼吸起伏较大的部位,打开呼 吸描记装置, 6、放血前观察各项生理指标,包括一般情况,皮肤粘膜颜色、肛温、血压、呼吸及肠系膜微循 环的变化 7、从股动脉放血至50ml的注射器内,边放血边观察血压的变化,一直到血压降至40mmHg,调整 注射器内血量,使血压维持在此水平(注射器内加入少量肝素)。 8、维持血压在40mmHg15-20分钟,观察注射器内血量的增减,失血期动物各项指标和微循环的 变化。 9、停止放血,将注射器内的血液倒入输液瓶内,快速从静脉输回原血和失血量等量的生理盐水 (150滴/分),进行紧急抢救。输血输液后,再观察动物的一股情况、生理指标、微循环的改 变。还可根据休克的病理生理学改变自行设计抢救方案,再观察抢救结果。 【实验讨论】家免失血性休克不同时期血压、微循环口径有何变化?为什么? 实验六急性右心衰竭(选做实验) [实验目的 1.学习复制急性右心衰竭的模型 2.观察右心衰竭时血流动力学的主要变化。 3.通过少对实验的观察分析,加深对心力衰竭的发生机理及病理生理变化的理解。 [实验原理到 通过急性肺小血管栓塞,引起右心后负荷增加;通过大量静脉输液,引起右心前负荷增加。由于右 心前、后负荷的过度增加,造成右心室收缩和舒张功能降低,而导致急性右心衰竭。 [实验对像] 家免。体重2.0~3.0kg,雌雄不限。 [实验器材及药品 动物手术器械一套、兔手术台、BL一410生物机能实验系统、输液及中心静脉压测量装置、三通开 关、静脉导管、动脉导管、气管插管、动脉夹、听诊器、注射器(50ml、10ml、5ml、1ml咯一个)、 针头、100℃温度计、0.3%肝素溶液、生理盐水、液体石蜡、1%普鲁卡因、20%乌拉坦溶液。 [实验步骤与观察刻 1.取健康家兔一只,称重,由耳缘静脉注射20%乌拉坦3~5m/kg后,仰卧固定于兔手术台上,颈部 剪毛,颈部正中做5~7cm长的切口。 (若全麻不满意,可在颈部正中皮下注射1%普鲁卡因2~3ml

3.探讨失血性休克的发病机理。 【药品与器材】25%乌拉坦溶液,1%普鲁卡因溶液,0.3% 肝素溶液,生理盐水,微循环灌流液。 手术器材一套,BL—410多媒体,微循环灌流装置,输血输液装置,动、静脉套管,测中心静脉压装 置,1m1、10ml注射器各1只。温度计。 【实验步骤】 1、取家兔一只称重后由耳缘静脉注入25%乌拉坦溶液〈4ml/kg〉。 2、动物仰卧固定于实验台,在甲状软骨下切开颈正中皮肤约6cm,钝性分离颈部软组织,游离出左 侧颈总动脉和右侧颈外静脉,穿线后备用。 3、左侧腹股沟部位触及动脉博动后,,沿动脉走行方向作3cm皮肤切口,分离出股动脉,穿线、插入 动脉插管,以备放血。 4、在右侧腹直肌旁作6cm纵切口,钝性分离肌肉,打开腹腔后,推开大网膜,找出一段游离度较大 的小肠肠袢,轻轻的从腹腔中拉出,放置在微循环灌流盒中,显微镜下观察微循环的变化。 5、将动脉导管插入左侧颈总动脉,连接血压测量装置。将连接输液装置的静脉导管插入右侧颈 外静脉,以备输液。将连接于记录仪的呼吸描记装置夹住家兔胸部呼吸起伏较大的部位,打开呼 吸描记装置。 6、放血前观察各项生理指标,包括一般情况,皮肤粘膜颜色、肛温、血压、呼吸及肠系膜微循 环的变化。 7、从股动脉放血至50ml的注射器内,边放血边观察血压的变化,一直到血压降至40mmHg,调整 注射器内血量,使血压维持在此水平(注射器内加入少量肝素)。 8、维持血压在4OmmHg15-20分钟,观察注射器内血量的增减,失血期动物各项指标和微循环的 变化。 9、停止放血,将注射器内的血液倒入输液瓶内,快速从静脉输回原血和失血量等量的生理盐水 (150滴/分),进行紧急抢救。输血输液后,再观察动物的一股情况、生理指标、微循环的改 变。还可根据休克的病理生理学改变自行设计抢救方案,再观察抢救结果。 【实验讨论】家兔失血性休克不同时期血压、微循环口径有何变化?为什么? 实验六 急性右心衰竭(选做实验) [实验目的] 1.学习复制急性右心衰竭的模型。 2.观察右心衰竭时血流动力学的主要变化。 3.通过对实验的观察分析,加深对心力衰竭的发生机理及病理生理变化的理解。 [实验原理] 通过急性肺小血管栓塞,引起右心后负荷增加;通过大量静脉输液,引起右心前负荷增加。由于右 心前、后负荷的过度增加,造成右心室收缩和舒张功能降低,而导致急性右心衰竭。 [实验对象] 家兔。体重2.0~3.0 kg,雌雄不限。 [实验器材及药品] 动物手术器械一套、兔手术台、BL—410生物机能实验系统、输液及中心静脉压测量装置、三通开 关、静脉导管、动脉导管、气管插管、动脉夹、听诊器、注射器(50ml、1Oml、5ml、1ml各一个)、 针头、100℃温度计、0.3%肝素溶液、生理盐水、液体石蜡、1%普鲁卡因、20%乌拉坦溶液。 [实验步骤与观察] 1.取健康家兔一只,称重,由耳缘静脉注射20%乌拉坦3~5ml/kg后,仰卧固定于兔手术台上,颈部 剪毛,颈部正中做5~7cm长的切口。(若全麻不满意,可在颈部正中皮下注射1%普鲁卡因2~3ml

做局部浸润麻醉。) 2.手术分离:气管、颈总动脉和颈外静脉。 3.分离注意:气管位于颈部正中,用止血钳在舌骨下肌群正中插入,并向前、后两端扩张创口,然后 将左右胸骨舌骨肌向两侧拉开,即暴露出气管。分离气管与食管之间的结缔组织,在气管背侧穿线 备用。颈总动脉位于气管两侧,用手触之有搏动感。颈总动脉与颈部神经被束在颈动脉鞘内,细心 分离左侧的颈动脉鞘膜,分离颈总动脉长4~5cm,穿两根线备用。颈外静脉分布很浅,在皮下胸锁 乳突肌外缘。将右侧切开之皮肤,用手指在皮肤外面向上顶起,即可见到该静脉(呈暗紫色的粗大 血管)。用止血钳沿血管走行方向钝性分离,分离长度3~4cm,穿两线备用。 4.全身肝素化:耳缘静脉注射0.3%肝素溶液2mkg体重。 5插管: (1)气管插管。在甲状软骨下0.5~1cm处两个软骨环之间剪开气管,再向头端作一纵切口,使之呈 倒"T"形,插入气管插管,并用线缚紧固定。 (2)左侧颈总动脉插管。用于描记动脉血压。插管前首先结扎颈总动脉远心端,近心端用动脉夹头 住(使两端距离尽可能张)。然后用眼科剪在靠近远心端结处的动脉壁上剪一斜口(为管径的13 ~12),插入预先充满肝素生理盐水的动脉导管,用已穿好的线结扎,并加以固定导管,以防脱落。 缓慢松开动脉夹。 (3)右侧颈外静脉插管。用于输液和中心静脉压测量。插管时先用动脉夹夹住静脉近心端,待静脉 充盈后结扎远心端。用眼科剪在靠近远心端结扎线处呈角剪一小口(约为管径的13或12),插入预 先充满肝素生理盐水的连有三通活塞的静脉导管,插入导管长度约5~7cm,此时导管口在上腔静脉 近右心房入口处。结扎固定插管。 6.连接呼吸、血压描记装置,打开BL一410生物机能实验系统,描记正常的呼吸、血压曲线,测量记 录中心静脉压、血压、心率 ,呼吸频率和深度、听心音强度,听胸背部有无水泡音,做肝中心静脉 压返流实验(用手轻推压右肋弓下3秒,中心静脉压上升以cmH2O柱数表示)· 7复制隐性右心衰竭模型。 (1)用1m注射器抽取预先加温至38c的液体石蜡1ml,以每分钟0.2ml的速度缓慢注入耳缘静脉,同 时密切观察血压、呼吸等变化。如有血压明显下降或中心静脉压明显上升,即停止注射。待血压和 中心静脉压又恢复到原对照水平时,再缓慢注入液体石蜡,直至血压有轻度下降(降低13~ 2.7kPa),或中心静脉压有明显升高为止(一般液体石蜡用量为0.5~1.0ml,不超0.5mkg)。 (2)待动物呼吸、血压稳定后,以每分钟约5~10m/kg的速度快速由静脉导管输入生理盐水,输液 过程中密切观察各项指标的变化(呼吸、血压、心率、心音强度、胸背部有无水泡音、中心静脉压以 及肝中心静脉压返流实验等)。直至动物死亡 (3)动物死亡后,挤压胸壁,观察气管内有无分泌物溢出。剖开胸、腹腔,观察有无胸水和腹水; 肝脏有无淤血肿大;肠系膜血管有无淤血,肠壁有无水肿;心脏各腔室体积有何改变;肺脏有无水 肿;最后切开腔静脉,让血液流出,观察肝脏和心腔体积的变化. [注意事项 1颈外静脉壁薄,易损伤出血,分离时应仔细行钝性分离,切忌用剪刀剪切。 2.静脉导管的插人深度为5~7cm,在插管过程中如遇阻力,可将导管稍微退出,调整方向后再插, 切忌硬插刺破血管。插好后可见中心静脉压计中液面随呼吸明显波动。 3注射液体石蜡时一定要缓慢,出现血压明显降低时应立即停止注射,否则会导致动物立即死亡。 4.全麻不宜过深,麻醉过深可因动物排尿增加而致实验时间延长, 5.尸检时注意不要损伤胸、腹腔血管,以免影响对胸腹水的观察。 [讨论题] 1,本实验是什么原因引起的右心衰竭?哪些指标变化是右心衰竭所致?

做局部浸润麻醉。) 2.手术分离:气管、颈总动脉和颈外静脉。 3.分离注意:气管位于颈部正中,用止血钳在舌骨下肌群正中插入,并向前、后两端扩张创口,然后 将左右胸骨舌骨肌向两侧拉开,即暴露出气管。分离气管与食管之间的结缔组织,在气管背侧穿线 备用。颈总动脉位于气管两侧,用手触之有搏动感。颈总动脉与颈部神经被束在颈动脉鞘内,细心 分离左侧的颈动脉鞘膜,分离颈总动脉长4~5cm,穿两根线备用。颈外静脉分布很浅,在皮下胸锁 乳突肌外缘。将右侧切开之皮肤,用手指在皮肤外面向上顶起,即可见到该静脉(呈暗紫色的粗大 血管)。用止血钳沿血管走行方向钝性分离,分离长度3~4cm,穿两线备用。 4.全身肝素化:耳缘静脉注射0.3%肝素溶液2ml/kg体重。 5.插管: (1)气管插管。在甲状软骨下0.5~1cm处两个软骨环之间剪开气管,再向头端作一纵切口,使之呈 倒"T"形,插入气管插管,并用线缚紧固定。 (2)左侧颈总动脉插管。用于描记动脉血压。插管前首先结扎颈总动脉远心端,近心端用动脉夹夹 住(使两端距离尽可能长)。然后用眼科剪在靠近远心端结扎处的动脉壁上剪一斜口(为管径的1/3 ~1/2),插入预先充满肝素生理盐水的动脉导管,用已穿好的线结扎,并加以固定导管,以防脱落。 缓慢松开动脉夹。 (3)右侧颈外静脉插管。用于输液和中心静脉压测量。插管时先用动脉夹夹住静脉近心端,待静脉 充盈后结扎远心端。用眼科剪在靠近远心端结扎线处呈角剪一小口(约为管径的1/3或1/2),插入预 先充满肝素生理盐水的连有三通活塞的静脉导管,插入导管长度约5~7cm,此时导管口在上腔静脉 近右心房入口处。结扎固定插管。 6.连接呼吸、血压描记装置,打开BL—410生物机能实验系统,描记正常的呼吸、血压曲线,测量记 录中心静脉压、血压、心率、呼吸频率和深度、听心音强度,听胸背部有无水泡音,做肝-中心静脉 压返流实验(用手轻推压右肋弓下3秒,中心静脉压上升以cmH2O柱数表示)。 7.复制急性右心衰竭模型。 (1)用1ml注射器抽取预先加温至38℃的液体石蜡1ml,以每分钟0.2ml的速度缓慢注入耳缘静脉,同 时密切观察血压、呼吸等变化。如有血压明显下降或中心静脉压明显上升,即停止注射。待血压和 中心静脉压又恢复到原对照水平时,再缓慢注入液体石蜡,直至血压有轻度下降(降低1.3~ 2.7kPa),或中心静脉压有明显升高为止(一般液体石蜡用量为0.5~1.Oml,不超0.5ml/kg)。 (2)待动物呼吸、血压稳定后,以每分钟约5~10ml/kg的速度快速由静脉导管输入生理盐水,输液 过程中密切观察各项指标的变化(呼吸、血压、心率、心音强度、胸背部有无水泡音、中心静脉压以 及肝-中心静脉压返流实验等)。直至动物死亡。 (3)动物死亡后,挤压胸壁,观察气管内有无分泌物溢出。剖开胸、腹腔,观察有无胸水和腹水; 肝脏有无淤血肿大;肠系膜血管有无淤血,肠壁有无水肿;心脏各腔室体积有何改变;肺脏有无水 肿;最后切开腔静脉,让血液流出,观察肝脏和心腔体积的变化。 [注意事项] 1.颈外静脉壁薄,易损伤出血,分离时应仔细行钝性分离,切忌用剪刀剪切。 2.静脉导管的插人深度为5~7cm,在插管过程中如遇阻力,可将导管稍微退出,调整方向后再插, 切忌硬插刺破血管。插好后可见中心静脉压计中液面随呼吸明显波动。 3.注射液体石蜡时一定要缓慢,出现血压明显降低时应立即停止注射,否则会导致动物立即死亡。 4.全麻不宜过深,麻醉过深可因动物排尿增加而致实验时间延长。 5.尸检时注意不要损伤胸、腹腔血管,以免影响对胸腹水的观察。 [讨论题] 1.本实验是什么原因引起的右心衰竭?哪些指标变化是右心衰竭所致?

2.本实验有无缺氧?有哪些缺氧类型?其发生机理是什么? 3.有无酸碱平衡紊乱和肺水肿?如果有,其发生机理致如何? 4肝-中心静脉压返流实验说明什么问题? 实验七:病例讨论 一、主诉:某男,45岁,车祸致左大腿撕斯裂伤,腹痛急诊入院。 入院检查:患者面色苍白,精神淡漠,意识尚清。全身多处软组织挫伤。左腹股沟处简单包扎,并 有大量渗血。血压105/85mmHg,心率96次分。B超示脾破裂,腹腔积血约600ml。 治疗情况:手术探查左腹股沟处长约7c撕裂伤口,股动、静脉部分离断,脾破裂,遂行血管修补术 和脾摘除术。术中输血400ml。术后持续输注5%葡萄糖溶液。术后2h血压80/50mmHg,给予肾上腺 素、左旋多巴,血压维持在85/60mmHg。术后患者神志模糊,持续无尿,皮肤发凉。次日7时血压 降至70/40mmHg,静推肾上腺素血压不能回升,患者昏迷,7时30分血压测不到,呼吸、心跳微 弱。7时50分抢救无效,宣告死亡。 问题 1.为什么入院时血压基本正常,手术缝合血管,摘除脾脏并输血补液后血压反而下降? 2.为什么后期给予缩血管药物血压不回升? 3.上述治疗过程还有改进的方面吗? 二、男性,35岁,农民,因于当日清晨4时在蔬菜温室为火炉添煤时,昏倒在温室台阶上,4小时后 方被发现,急诊入院。病人以往身体健康。体检:体温37.5℃,呼吸24次min,脉搏110次/min,血 压100/70mmHg。神志不清,口唇呈樱桃红色。其它无异常发现。实验室检查:Pa2:95mmHg, HbC0:30%,血浆HC03-:13.5mmoL。入院后立即吸氧,不久渐醒。给予纠酸、补液等处理后,病 情迅速好转。 讨论题: 1.是什么原因引起病人神志不清?简述其发生机制。 2.该病人为什么会有血浆HCO3-减低?呼吸和心率加 快又是如何引起的?

2.本实验有无缺氧?有哪些缺氧类型?其发生机理是什么? 3.有无酸碱平衡紊乱和肺水肿?如果有,其发生机理如何? 4.肝-中心静脉压返流实验说明什么问题? 实验七:病例讨论 一、主诉:某男,45岁,车祸致左大腿撕裂伤,腹痛急诊入院。 入院检查:患者面色苍白,精神淡漠,意识尚清。全身多处软组织挫伤。左腹股沟处简单包扎,并 有大量渗血。血压105/85mmHg,心率96次/分。B超示脾破裂,腹腔积血约600ml。 治疗情况:手术探查左腹股沟处长约7cm撕裂伤口,股动、静脉部分离断,脾破裂,遂行血管修补术 和脾摘除术。术中输血400ml。术后持续输注5%葡萄糖溶液。术后2h血压80/50mmHg,给予肾上腺 素、左旋多巴,血压维持在85/60mmHg。术后患者神志模糊,持续无尿,皮肤发凉。次日7时血压 降至70/40mmHg,静推肾上腺素血压不能回升,患者昏迷,7时30分血压测不到,呼吸、心跳微 弱。7时50分抢救无效,宣告死亡。 问题: 1.为什么入院时血压基本正常,手术缝合血管,摘除脾脏并输血补液后血压反而下降? 2.为什么后期给予缩血管药物血压不回升? 3.上述治疗过程还有改进的方面吗? 二、男性,35岁,农民,因于当日清晨4时在蔬菜温室为火炉添煤时,昏倒在温室台阶上,4小时后 方被发现,急诊入院。病人以往身体健康。体检:体温37.5℃,呼吸24次/min,脉搏110次/min,血 压100/70mmHg。神志不清,口唇呈樱桃红色。其它无异常发现。实验室检查:PaO2:95mmHg, HbCO:30%,血浆HCO3-:13.5mmol/L。入院后立即吸氧,不久渐醒。给予纠酸、补液等处理后,病 情迅速好转。 讨论题: 1.是什么原因引起病人神志不清?简述其发生机制。 2.该病人为什么会有血浆HCO3-减低?呼吸和心率加 快又是如何引起的?

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