吉林大学基础医学院：实验教学中心（教案讲义）动物实验操作的基本知识

动物实验操作的基本知识 一、实验动物抓拿固定 (一)小白鼠(mouse) 右手抓住其尾，放在鼠笼铁纱网上，然后用左手拇指及食指沿其背向前抓住其颈部，并 以左手的小拇指和掌部夹住其尾固定在手上（图3-）。取尾血及尾静脉注射时，可将 mouse固定在金属或木制的同定器上。 (二)大白鼠(a) 实验者应戴帆布手套，用右手将鼠尾抓住提起，放在粗糙的台面或鼠笼上，抓住鼠尾向 后轻拉，左手抓紧两耳和头颈部皮肤，余下三指紧捏鼠背部皮肤，如果a后肢挣扎厉害， 可将鼠尾放在小指和无名指之间夹住，将整个鼠固定在左手中，右手进行操作（图3-2）， 若进行手术或解剖，则应事先麻醉或处死，然后用棉线活结缚四肢，用棉线固定门齿，背卧 位固定在大鼠固定板上。需取尾血及尾静脉注射时，可将其固定在大鼠固定盒里，将鼠尾留 在外面供实验操作。 (三)豚鼠(cay) Cy具有胆小易惊的特性，因此抓取时要求快、稳、准。一般方法是：以右手拇指和 食指夹住两前肢及头部，使整个颈胸部皆在手掌中（不要抓得太紧以免蜜息），左手抓住两 后肢，使腹部向上，而后进行操作（图3-3）。 (四)蛙或蟾蜍(frog or toad)) 捉拿方法宜用左手将动物背部贴紧手掌固定，以中指、无名指、小拇指压住其左腹侧和 后肢，拇指和食指分别压住左，右前肢，右手进行操作（图3-4）。 在捉拿toad时，注意勿挤压其两侧耳部突起之毒腺，以免毒液射到眼中。 实验如需长时间观察，可破坏其脑和脊髓以后放在蛙板上固定进行操作。 (五)家兔(rabbit0) 用右手抓住其颈背部皮毛，轻提动物，再以左手托住其臀部，使家兔的体重主要落在左 手掌心，然后按实验要求固定（图3-5）。作兔耳血管注射或取血时，可用兔盒固定。作各 种手术时，可将家兔麻醉后固定在手术台上。固定方法常采用仰卧位固定，四肢用粗棉线固 定，头用免头固定夹固定或用棉线钩住家兔门齿再固定在兔台头端铁柱上。， (六)狗(dog)

动物实验操作的基本知识 一、实验动物抓拿固定 （一）小白鼠(mouse) 右手抓住其尾，放在鼠笼铁纱网上，然后用左手拇指及食指沿其背向前抓住其颈部，并 以左手的小拇指和掌部夹住其尾固定在手上(图 3-1)。取尾血及尾静脉注射时，可将 mouse 固定在金属或木制的固定器上。 （二）大白鼠(rat) 实验者应戴帆布手套，用右手将鼠尾抓住提起，放在粗糙的台面或鼠笼上，抓住鼠尾向 后轻拉，左手抓紧两耳和头颈部皮肤，余下三指紧捏鼠背部皮肤，如果 rat 后肢挣扎厉害， 可将鼠尾放在小指和无名指之间夹住，将整个鼠固定在左手中，右手进行操作（图 3-2）。 若进行手术或解剖，则应事先麻醉或处死，然后用棉线活结缚四肢，用棉线固定门齿，背卧 位固定在大鼠固定板上。需取尾血及尾静脉注射时，可将其固定在大鼠固定盒里，将鼠尾留 在外面供实验操作。 （三）豚鼠(cavy) Cavy 具有胆小易惊的特性，因此抓取时要求快、稳、准。一般方法是：以右手拇指和 食指夹住两前肢及头部，使整个颈胸部皆在手掌中（不要抓得太紧以免窒息），左手抓住两 后肢，使腹部向上，而后进行操作（图 3-3）。 （四）蛙或蟾蜍(frog or toad) 捉拿方法宜用左手将动物背部贴紧手掌固定，以中指、无名指、小拇指压住其左腹侧和 后肢，拇指和食指分别压住左，右前肢，右手进行操作（图 3-4）。 在捉拿 toad 时，注意勿挤压其两侧耳部突起之毒腺，以免毒液射到眼中。 实验如需长时间观察，可破坏其脑和脊髓以后放在蛙板上固定进行操作。 （五）家兔(rabbit) 用右手抓住其颈背部皮毛，轻提动物，再以左手托住其臀部，使家兔的体重主要落在左 手掌心，然后按实验要求固定（图 3-5）。作兔耳血管注射或取血时，可用兔盒固定。作各 种手术时，可将家兔麻醉后固定在手术台上。固定方法常采用仰卧位固定，四肢用粗棉线固 定，头用兔头固定夹固定或用棉线钩住家兔门齿再固定在兔台头端铁柱上。 （六）狗(dog)

犬性凶恶，能咬人，因此进行实验时第一个步骤就是要绑住犬嘴，驯服的犬绑嘴时可从 侧面靠近轻轻扶摸其背部皮毛，然后用寸带迅速兜住犬的下颌，绕到上颌打一个结，在 绕回下领打第二个结，然后将寸带引至头后颌颈部打第三个结，并多系一个活结（以备 麻醉后解脱)。注意捆绑松紧度要适宜。俏若此举不成，应用犬头钳夹住其颈部，将犬 按倒在地，再绑其嘴（图3-6）。 头部固定：固定犬头需用一特制的狗头固定器，犬头固定器为一圆铁圈，圈的中央有 个弓形铁，与棒螺丝相连，下面有一根平直铁门。操作时先将犬舌拉出，把犬嘴插入周定器 的铁圈内，再用平直铁日横于犬齿后部的上下领之间，然后向下旋转棒螺丝，使弓形铁逐渐 下压在动物的下领骨上，把铁柄固定在犬头的铁柱上即可（图3-7）。 四肢固定：如采取仰卧位，四肢固定方法与家兔相同。 图31 Mouse的捉拿固定与腹腔注射 图3-2Rat的捉拿法

犬性凶恶，能咬人，因此进行实验时第一个步骤就是要绑住犬嘴，驯服的犬绑嘴时可从 侧面靠近轻轻扶摸其背部皮毛，然后用寸带迅速兜住犬的下颌，绕到上颌打一个结，在 绕回下颌打第二个结，然后将寸带引至头后颌颈部打第三个结，并多系一个活结（以备 麻醉后解脱）。注意捆绑松紧度要适宜。倘若此举不成，应用犬头钳夹住其颈部，将犬 按倒在地，再绑其嘴（图 3-6）。 头部固定：固定犬头需用一特制的狗头固定器，犬头固定器为一圆铁圈，圈的中央有一 个弓形铁，与棒螺丝相连，下面有一根平直铁闩。操作时先将犬舌拉出，把犬嘴插入固定器 的铁圈内，再用平直铁闩横于犬齿后部的上下颌之间，然后向下旋转棒螺丝，使弓形铁逐渐 下压在动物的下颌骨上，把铁柄固定在犬头的铁柱上即可（图 3-7）。 四肢固定：如采取仰卧位，四肢固定方法与家兔相同。 图 3-1 Mouse 的捉拿固定与腹腔注射 图 3-2 Rat 的捉拿法

图3-3Cavy的捉拿与固定方法 图3-4Frog的捉拿固定 图3-5 Rabbit的正确捉拿方法

图 3-3 Cavy 的捉拿与固定方法 图 3-4 Frog 的捉拿固定 图 3-5 Rabbit 的正确捉拿方法

0入 二 图3-6捆绑犬嘴的方法及犬头钳 图3-7犬台与犬头周定器 二、实验动物的麻醉(anesthesia)和给药途径 (一)Anesthesia的方法和麻醉药的用量 进行在体动物实验时，宜用清醒状态的动物，这样将更接近生理状态，有的实验则必须 用清醒动物。但是进行手术时或实验时为了消除疼痛或减少动物挣扎而影响实验结果，必须 使用麻醉药。Anesthesia动物时，应根据不同的实验要求和不同的动物选择麻醉药。 1.局部麻醉(1 ocal anesthesia)如以0.5~2%普鲁卡因(procaine)给兔颈部皮下作浸润麻 醉，可进行局部手术 2.全身麻醉(general anesthesia) (1)吸入麻醉(inhalation anesthesia) 乙醚(ehr)蘸在棉球上放入玻璃罩内，利用其挥发的性质，经呼吸道进入肺泡，对动 物进行麻醉。可用于各种动物。适用于时间短的手术过程或实验，吸入后约15一20m开

图 3-6 捆绑犬嘴的方法及犬头钳 图 3-7 犬台与犬头固定器 二、实验动物的麻醉(anesthesia)和给药途径 （一）Anesthesia 的方法和麻醉药的用量 进行在体动物实验时，宜用清醒状态的动物，这样将更接近生理状态，有的实验则必须 用清醒动物。但是进行手术时或实验时为了消除疼痛或减少动物挣扎而影响实验结果，必须 使用麻醉药。Anesthesia 动物时，应根据不同的实验要求和不同的动物选择麻醉药。 1．局部麻醉（local anesthesia）如以 0.5～2%普鲁卡因(procaine)给兔颈部皮下作浸润麻 醉，可进行局部手术。 2．全身麻醉（general anesthesia） （1） 吸入麻醉（inhalation anesthesia） 乙醚（ether）蘸在棉球上放入玻璃罩内，利用其挥发的性质，经呼吸道进入肺泡，对动 物进行麻醉。可用于各种动物。适用于时间短的手术过程或实验，吸入后约 15～20min 开

始发挥作用。采用乙醚麻醉的优点是：anesthesia的深度易于掌握，比较安全，麻醉后苏醒 快。缺点是：需要专人管理。在麻醉初期常出现强烈兴奋现象，对呼吸道有较强的刺激作用。 对于经验不足的操作者，用乙醚麻醉动物时容易因anesthesia过深而致动物死亡。另外，乙 醚易燃，易爆，对人亦有作用，使用时应避火，通风，注意安全 (2)注射麻醉(injectionanesthesia) 巴比妥类：各种巴比妥类药物的吸收和代谢速度不同，其作用时间亦有长有短。戊巴比 妥钠(sodiumentobabita)作用时间为2一4h,属中效巴比妥钠类，实验中最为常用。常 配成3~5%的水溶液，由静脉或腹腔给药.。硫喷妥钠(sodium thiopental)作用时间仅为15~ 30min,属短效或超短效巴比妥类，适用于较短时程的实验。 巴比妥类对呼吸中枢有较强的抑制作用，anesthesia过深时，呼吸活动可完全停止。故 应注意防止给药过多过快。对心血管系统也有复杂的影响，故这类药物用于研究心血管机能 的实验动物麻醉，是不够理想的。 氯醛糖(chloralose):本药溶解度小，常配成2%水溶液。使用前需先在水浴锅中加热， 使其溶解，但加热温度不宜过高，以免降低药效。本药的安全度大，能导致持久的浅麻醉， 对植物性神经中枢的机能无明显抑制作用，对痛觉的影响也极微，故特别适用于研究要求保 留生理反射（如心血管反射）或研究神经系统反应的实验。 乌拉坦：又名氨基甲酸乙酯(urethane),与氯醛糖类似，可导致较持久的浅麻醉，对呼 吸无明显影响。乌拉坦对兔的麻醉作用较强，是家兔急性实验常用的麻醉药。对猫和狗则奏 效较慢，在大鼠和兔能诱发肿瘤，需长期存活的慢性实验动物最好不用它麻醉。本药易溶于 水，使用时配为10%一25%的溶液。 (二)动物给药途径 1.灌胃法(,ig) (1)Mouse 用左手固定mous©，使其头颈部充分伸直，但不宜抓得过紧，以免室息。右手拿起连有 小鼠灌胃针的注射器，将针头小心自口角插入口腔，紧贴上腭入胃，注入药液（图3-8）， 操作时应避免灌胃针插入气管。插入时遇有阻力应抽出再试，如错插入气管注药时可立即死 亡。注射量0.1~0.25ml/10g体重。 (2)Rat 左手戴防护手套握住Ra头骨部，或压在鼠笼上固定，右手将连有注射器的灌骨针头从 其口角插入口腔，继续用灌胃针压其头部，使口腔与食道呈一直线，再将针头沿咽后壁轻轻

始发挥作用。采用乙醚麻醉的优点是：anesthesia 的深度易于掌握，比较安全，麻醉后苏醒 快。缺点是：需要专人管理。在麻醉初期常出现强烈兴奋现象，对呼吸道有较强的刺激作用。 对于经验不足的操作者，用乙醚麻醉动物时容易因 anesthesia 过深而致动物死亡。另外，乙 醚易燃，易爆，对人亦有作用，使用时应避火，通风，注意安全。 （2） 注射麻醉（injection anesthesia） 巴比妥类：各种巴比妥类药物的吸收和代谢速度不同，其作用时间亦有长有短。戊巴比 妥钠（sodium pentobarbital）作用时间为 2～4h，属中效巴比妥钠类，实验中最为常用。常 配成 3～5%的水溶液，由静脉或腹腔给药。硫喷妥钠（sodium thiopental）作用时间仅为 15～ 30min，属短效或超短效巴比妥类，适用于较短时程的实验。 巴比妥类对呼吸中枢有较强的抑制作用，anesthesia 过深时，呼吸活动可完全停止。故 应注意防止给药过多过快。对心血管系统也有复杂的影响，故这类药物用于研究心血管机能 的实验动物麻醉，是不够理想的。 氯醛糖(chloralose)：本药溶解度小，常配成 2%水溶液。使用前需先在水浴锅中加热， 使其溶解，但加热温度不宜过高，以免降低药效。本药的安全度大，能导致持久的浅麻醉， 对植物性神经中枢的机能无明显抑制作用，对痛觉的影响也极微，故特别适用于研究要求保 留生理反射（如心血管反射）或研究神经系统反应的实验。 乌拉坦：又名氨基甲酸乙酯（urethane），与氯醛糖类似，可导致较持久的浅麻醉，对呼 吸无明显影响。乌拉坦对兔的麻醉作用较强，是家兔急性实验常用的麻醉药。对猫和狗则奏 效较慢，在大鼠和兔能诱发肿瘤，需长期存活的慢性实验动物最好不用它麻醉。本药易溶于 水，使用时配为 10%～25%的溶液。 （二）动物给药途径 1． 灌胃法(intragastric injection，ig) （1）Mouse 用左手固定 mouse，使其头颈部充分伸直，但不宜抓得过紧，以免窒息。右手拿起连有 小鼠灌胃针的注射器，将针头小心自口角插入口腔，紧贴上腭入胃，注入药液（图 3-8）。 操作时应避免灌胃针插入气管。插入时遇有阻力应抽出再试，如错插入气管注药时可立即死 亡。注射量 0.1～0.25ml/10g 体重。 （2）Rat 左手戴防护手套握住 Rat 头骨部，或压在鼠笼上固定，右手将连有注射器的灌胃针头从 其口角插入口腔，继续用灌胃针压其头部，使口腔与食道呈一直线，再将针头沿咽后壁轻轻

进入食道，这时如插入畅通，无阻力，可插得较深，插入后动物安静，呼吸无异常，可将药 液注入。应避免针头或导管插入气管。灌胃量不超过2m/只。 (3)Cavy 一个人抓住Cay头颈部和四肢，另一人将“含咀“放入Cay口内旋转使舌压在其下， 再将塑料管或导尿管插入，然后注入药物，因Cy上腭部有牙齿，易阻止导管插入，应把 Cay头部与躯体拉直，便于导管避开阻碍而进入食道。 (4)Rabbit 般采用开口器和小儿导管或导尿管。开口器是2×2×10cm的木片或竹片，呈纺棰形， 于正中垂直开一6一8mm直经的圆孔制成。灌胃时，将动物固定于竖立体位，将开口器放 于动物的上，下腭齿之间，两端露出口角处，用绳将它固定或用手周定。右手将导管由开口 器的小圆孔，沿咽后慢慢进入食道插入胃中，为防止插入气管内，将导管外端插入盛水的小 烧杯中，如随动物呼吸而有气泡骨出，表明插入气管应立即拔出插管：若不骨气泡，表明导 管插入胃中，方可注入药液，注入完毕，以少量清水冲洗残留管内药液，再拔出导管。 2.皮下注射(subeutaneous injection,sc) (I)Frog或cavy淋巴囊注射法 Fg的皮下有数个淋巴囊，注入药物易吸收。一般以腹部淋巴囊作为给药途径，另外可 注于领下，胸或大腿等淋巴由于其皮肤薄，缺乏弹性，如果用注射器直接刺入拔针后药液易 自注入孔流出，因此注射胸淋巴囊时，应从口角入口腔底部刺入肌层再返入皮下，针尖进入 胸淋巴囊后进行注射（图39）：注射大腿淋巴囊时针尖从小腿皮肤刺入绕过膝关节进入大 腿淋巴囊：注射腹淋巴囊时，针尖从胸淋巴囊刺入：进入腹淋巴囊注射或从F©g大腿上端 刺入，经过大腿肌层入腹壁肌层再转入腹淋巴囊，然后注射药液。注射量一般0.25一1.0ml山 只。 (2)Mouse皮下注射 通常在背部皮下注射，注射时以左手拇指和中指将mOus颈背部皮肤轻轻提起，食指 轻按其皮肤，使其形成一个三角形小窝，右手持注射器，从三角窝下部刺入皮下，轻轻摆动 针头，如易摆动时则表明针头在皮下，此刻可将药液注入，针头拔出后，以左手在针刺部位 轻轻捏住皮肤片刻，以防药液流出。大批动物注射时，可将Mous心放在鼠笼盖或粗糙平面 上，左手拉住尾部，Mous自然向前爬动，此时右手持针迅速刺入背部皮下，推注药液。 (3)Rat皮下注射 注射部位可在背部或后肢外侧皮下，操作时轻轻提起注射部位皮肤，将注射针头刺入皮

进入食道，这时如插入畅通，无阻力，可插得较深，插入后动物安静，呼吸无异常，可将药 液注入。应避免针头或导管插入气管。灌胃量不超过 2ml/只。 （3）Cavy 一个人抓住 Cavy 头颈部和四肢，另一人将“含咀”放入 Cavy 口内旋转使舌压在其下， 再将塑料管或导尿管插入,然后注入药物，因 Cavy 上腭部有牙齿，易阻止导管插入，应把 Cavy 头部与躯体拉直，便于导管避开阻碍而进入食道。 （4）Rabbit 一般采用开口器和小儿导管或导尿管。开口器是 2×2×10cm 的木片或竹片，呈纺棰形， 于正中垂直开一 6～8mm 直经的圆孔制成。灌胃时，将动物固定于竖立体位，将开口器放 于动物的上，下腭齿之间，两端露出口角处，用绳将它固定或用手固定。右手将导管由开口 器的小圆孔，沿咽后慢慢进入食道插入胃中，为防止插入气管内，将导管外端插入盛水的小 烧杯中，如随动物呼吸而有气泡冒出，表明插入气管应立即拔出插管；若不冒气泡，表明导 管插入胃中，方可注入药液，注入完毕，以少量清水冲洗残留管内药液，再拔出导管。 2．皮下注射(subcutaneous injection，sc) （1）Frog 或 cavy 淋巴囊注射法 Frog 的皮下有数个淋巴囊，注入药物易吸收。一般以腹部淋巴囊作为给药途径，另外可 注于颌下，胸或大腿等淋巴由于其皮肤薄，缺乏弹性，如果用注射器直接刺入拔针后药液易 自注入孔流出，因此注射胸淋巴囊时，应从口角入口腔底部刺入肌层再返入皮下，针尖进入 胸淋巴囊后进行注射（图 3-9）；注射大腿淋巴囊时针尖从小腿皮肤刺入绕过膝关节进入大 腿淋巴囊；注射腹淋巴囊时，针尖从胸淋巴囊刺入；进入腹淋巴囊注射或从 Frog 大腿上端 刺入，经过大腿肌层入腹壁肌层再转入腹淋巴囊，然后注射药液。注射量一般 0.25～1.0ml/ 只。 （2）Mouse 皮下注射 通常在背部皮下注射，注射时以左手拇指和中指将 mouse 颈背部皮肤轻轻提起，食指 轻按其皮肤，使其形成一个三角形小窝，右手持注射器，从三角窝下部刺入皮下，轻轻摆动 针头，如易摆动时则表明针头在皮下，此刻可将药液注入，针头拔出后，以左手在针刺部位 轻轻捏住皮肤片刻，以防药液流出。大批动物注射时，可将 Mouse 放在鼠笼盖或粗糙平面 上，左手拉住尾部，Mouse 自然向前爬动，此时右手持针迅速刺入背部皮下，推注药液。 （3）Rat 皮下注射 注射部位可在背部或后肢外侧皮下，操作时轻轻提起注射部位皮肤，将注射针头刺入皮

下，一次注射量为<1m/100g: (4)Cay皮下注射 部位可选用两肢内侧、背部、肩部等皮下脂肪少的部位。通常在大腿内侧注射，针头与 皮肤呈45度角的方向刺入皮下，确定针头在皮下推入药液，拔出针头后，拇指轻压注药部 位片刻。 (5)Rabbit皮下注射法：参照mouse皮下注射法。 3.腹腔注射法intraperitoneal injction,ip) (1)Mouse 左手持鼠，将腹部朝上，右手持注射器，针头刺入方向可与腹部呈45°角，一般由左或 右下腹部刺入，为避免刺伤内脏，可将头部放低，使脏器移向横膈之处，（勿刺破肝脏和膀胱）。 当针头刺入腹腔是时，有落空感即可给药（图310）。 (2)Rat,cay,rabbit,猎等的腹腔注射皆可参照mouse腹腔注射法。但应注意Rabbit 与猎在腹白线两侧注射时，离腹白线约1cm处进针。 图3-8 Mouse的灌胃方法

下，一次注射量为<1ml/100g。 （4）Cavy 皮下注射 部位可选用两肢内侧、背部、肩部等皮下脂肪少的部位。通常在大腿内侧注射，针头与 皮肤呈 45 度角的方向刺入皮下，确定针头在皮下推入药液，拔出针头后，拇指轻压注药部 位片刻。 （5）Rabbit 皮下注射法：参照 mouse 皮下注射法。 3．腹腔注射法(intraperitoneal injection, ip) （1）Mouse 左手持鼠，将腹部朝上，右手持注射器，针头刺入方向可与腹部呈 45°角，一般由左或 右下腹部刺入，为避免刺伤内脏,可将头部放低，使脏器移向横膈之处，（勿刺破肝脏和膀胱）。 当针头刺入腹腔是时，有落空感即可给药（图 3-10）。 （2）Rat，cavy，rabbit，猫等的腹腔注射皆可参照 mouse 腹腔注射法。但应注意 Rabbit 与猫在腹白线两侧注射时，离腹白线约 1cm 处进针。 图 3-8 Mouse 的灌胃方法

图3-9FrOg淋巴囊注射 图3-10 Mouse腹腔注射 4.肌肉注射法(,im) (1)Mouse、.at、cay:一般因肌肉少，不作im,如需要时，可将动物固定后，一手 拉直动物左或右侧后肢，将针头刺入后肢大腿外侧肌肉内，用5~7号针头，mouse一次注 射量不超过0.1m/只。 (2)Rabbit:固定动物，右手持注射器，令其与肌肉呈60°角一次刺入肌肉中，先抽 回针栓，视无回血时，将药液注入，注射后轻按摩注射部位，帮助药液吸收。 5.静脉注射法(intravenous injection,.iW) (1)Mouse,rat 将mous放入特制圆筒（或将鼠放在鼠笼内，使鼠尾从鼠笼网眼中拉出）尾部用45一 50℃温水浸泡半mn或用75%酒精棉（二甲苯）擦之，使血管扩张，并使表皮角质软化， 可以看见三条静脉，选择其中较粗大静脉（一般选左，右两侧之静脉）用吸取好药的注射器 针头(4~4%号针头)刺入，缓缓将药液注入（图3-11）。如针头确已在静脉血管内，则药

图 3-9 Frog 淋巴囊注射 图 3-10 Mouse 腹腔注射 4．肌肉注射法(intramuscular injection，im) （1）Mouse、rat、cavy：一般因肌肉少，不作 im，如需要时，可将动物固定后，一手 拉直动物左或右侧后肢，将针头刺入后肢大腿外侧肌肉内，用 5～7 号针头，mouse 一次注 射量不超过 0.1ml/只。 （2） Rabbit：固定动物，右手持注射器，令其与肌肉呈 60°角一次刺入肌肉中，先抽 回针栓，视无回血时，将药液注入，注射后轻按摩注射部位，帮助药液吸收。 5．静脉注射法(intravenous injection, iv) （1）Mouse，rat 将 mouse 放入特制圆筒（或将鼠放在鼠笼内，使鼠尾从鼠笼网眼中拉出）尾部用 45～ 50℃温水浸泡半 min 或用 75%酒精棉（二甲苯）擦之，使血管扩张，并使表皮角质软化， 可以看见三条静脉，选择其中较粗大静脉（一般选左，右两侧之静脉）用吸取好药的注射器 针头（4～4½号针头）刺入，缓缓将药液注入（图 3-11）。如针头确已在静脉血管内，则药

液进入无阻，否则局部降起发白出现皮丘，这时可以拔出针头重新穿刺。尾静脉注射时必须 从近尾部开始，这样可以重复注射数次。注射量为0.1~0.5m10g体重。 (2)Cavy 可选用多部位的V,如前肢皮下头静脉，后肢小隐静脉，耳壳静脉或雄鼠的阴茎静脉 偶可心内注射。一般前肢皮下头静脉穿刺易成功。也可先将后肢皮肤切开，暴露胫前静脉， 直接穿刺注射。注射量不超过2ml。 (3)Rabbit Rabbit静脉注射一般采用耳缘静脉（兔耳外缘的血管为静脉，中央的血管为动脉）。先 除去注射部位的兔毛，用酒精棉球涂擦耳缘静脉部皮肤。以左手食指放在耳下将免耳垫起， 并以拇指按压耳缘部分，右手持6~7号针头的注射器，尽量从血管远端刺入血管（不一定 有回血)。注射时针头先刺入皮下，沿皮下向前推进少许，然后刺入血管。针头刺入血管后 再稍向前推进，轻轻推动针栓，若无阻力和局部皮肤发白隆起现象，即可注药。注射完毕后， 用棉球压住针眼，拔去针头。 一般耳内缘静脉深不易周定，故不用或少用，外缘静脉浅易周定常用。 (4)D0g 对未经麻醉的犬，可选用前肢皮下头静脉或后肢小隐静脉注射。操作时，先将注射部位 毛剪去。在静脉血管的近心端，用橡皮带绑扎肢体，使血管充盈。注射器针头向静脉血管的 近心端方向穿刺。回抽注射器针栓，如有回血，则表明针尖在血管内，即可推注药液（图 3-12) 英 图311小鼠尾静脉注射方法

液进入无阻，否则局部隆起发白出现皮丘，这时可以拔出针头重新穿刺。尾静脉注射时必须 从近尾部开始，这样可以重复注射数次。注射量为 0.1～0.5ml/10g 体重。 （2）Cavy 可选用多部位的 iv，如前肢皮下头静脉，后肢小隐静脉，耳壳静脉或雄鼠的阴茎静脉， 偶可心内注射。一般前肢皮下头静脉穿刺易成功。也可先将后肢皮肤切开，暴露胫前静脉， 直接穿刺注射。注射量不超过 2ml。 （3）Rabbit Rabbit 静脉注射一般采用耳缘静脉（兔耳外缘的血管为静脉，中央的血管为动脉）。先 除去注射部位的兔毛，用酒精棉球涂擦耳缘静脉部皮肤。以左手食指放在耳下将兔耳垫起， 并以拇指按压耳缘部分，右手持 6～7 号针头的注射器，尽量从血管远端刺入血管（不一定 有回血）。注射时针头先刺入皮下，沿皮下向前推进少许，然后刺入血管。针头刺入血管后 再稍向前推进，轻轻推动针栓，若无阻力和局部皮肤发白隆起现象，即可注药。注射完毕后， 用棉球压住针眼，拔去针头。 一般耳内缘静脉深不易固定，故不用或少用，外缘静脉浅易固定常用。 （4） Dog 对未经麻醉的犬，可选用前肢皮下头静脉或后肢小隐静脉注射。操作时，先将注射部位 毛剪去。在静脉血管的近心端，用橡皮带绑扎肢体，使血管充盈。注射器针头向静脉血管的 近心端方向穿刺。回抽注射器针栓，如有回血，则表明针尖在血管内，即可推注药液（图 3-12）。 图 3-11 小鼠尾静脉注射方法

图3-12D0g的前肢头静脉及后肢小隐静脉注射方法 6.椎管内注射(vertebral canal injection) 剪去兔腰骶部的毛，消毒，然后把动物俯卧于实验台上，左手肘关节及左肋夹住动物头 部及其身体，使之周定，再用左手将其尾端向腹侧弯曲，使腰骶部凸出，以增大脊突间隙。 注射器针头自第一骶骨前正中轻轻刺入，当刺到椎管时，有似刺透硬膜感觉，此时动物尾巴 随针刺而动或后肢跳动，则证明刺中。若刺不中时，不必拔出针头，以针尖不高脊柱中线将 针头稍稍撒出一点，换方向再刺，当证实针确实在椎管内时，即可注射药液。一般一只家兔 药量为0.5~1.0ml. 犬的椎管内注射时也大致与家兔相似，一般是两人协作进行。 7.椎动脉注射(vertebral artery) 在rabbit剑突上6cm处自胸骨左缘向外横切口4~5cm,分束切断胸大肌，胸小肌，找 出锁骨下静脉双侧结扎，于两线间剪断静脉，分离出锁骨下动脉，沿其走向分离出内孔动脉， 椎动脉，颈深支，肌皮支。除椎动脉外，分别结扎锁骨下动脉分支的进心端。于椎动脉上方 结扎锁骨下动脉远心端，在结扎前选择合适位置（靠近肌皮支处为宜）剪一小口，插一腰穿 刺针直至椎动脉分支前，结扎，固定，给药。 犬和猫椎动脉注射时不必开胸。在颈下部切口找出左颈总动脉，向下追踪到锁骨下动脉。 结扎其上覆盖的颈外静脉，在其向内转弯处向下分离，可见发自锁骨下动脉的右侧椎动脉向 上经肌层进入体腔内，插管给药。 三、实验动物的取血过程和方法 (-)Mouse、rat和cay 1.尾尖取血将尾尖剪掉1~2mm(mouse)或5~10mm(rat),然后自尾根部向尖部

图 3-12 Dog 的前肢头静脉及后肢小隐静脉注射方法 6．椎管内注射(vertebral canal injection) 剪去兔腰骶部的毛，消毒，然后把动物俯卧于实验台上，左手肘关节及左肋夹住动物头 部及其身体，使之固定，再用左手将其尾端向腹侧弯曲，使腰骶部凸出，以增大脊突间隙。 注射器针头自第一骶骨前正中轻轻刺入，当刺到椎管时，有似刺透硬膜感觉，此时动物尾巴 随针刺而动或后肢跳动，则证明刺中。若刺不中时，不必拔出针头，以针尖不高脊柱中线将 针头稍稍撤出一点，换方向再刺，当证实针确实在椎管内时，即可注射药液。一般一只家兔 药量为 0.5～1.0ml。 犬的椎管内注射时也大致与家兔相似，一般是两人协作进行。 7．椎动脉注射(vertebral artery injection) 在 rabbit 剑突上 6cm 处自胸骨左缘向外横切口 4～5cm，分束切断胸大肌，胸小肌，找 出锁骨下静脉双侧结扎，于两线间剪断静脉，分离出锁骨下动脉，沿其走向分离出内孔动脉， 椎动脉，颈深支，肌皮支。除椎动脉外，分别结扎锁骨下动脉分支的进心端。于椎动脉上方 结扎锁骨下动脉远心端，在结扎前选择合适位置（靠近肌皮支处为宜）剪一小口，插一腰穿 刺针直至椎动脉分支前，结扎，固定，给药。 犬和猫椎动脉注射时不必开胸。在颈下部切口找出左颈总动脉，向下追踪到锁骨下动脉。 结扎其上覆盖的颈外静脉，在其向内转弯处向下分离，可见发自锁骨下动脉的右侧椎动脉向 上经肌层进入体腔内，插管给药。 三、实验动物的取血过程和方法 （一）Mouse、rat 和 cavy 1．尾尖取血 将尾尖剪掉 1～2mm（mouse）或 5～10mm（rat），然后自尾根部向尖部